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基于肝细胞自身生命周期也较长(5~6个月),因此,靶向肝脏的小干扰RNA药物给药间隔也较长。
基因鸡尾酒疗法的崛起,为癌症治疗带来了革命性的变化。以siRNA为核心,这种疗法通过精确靶向癌细胞,有效阻止了癌细胞的分裂与扩散。例如,艾利兰公司的ALN-VSPo1就展现了出色的抗癌效果,不仅能停止两种癌细胞的再生,还能阻断肿瘤的血供,为治疗提供了新的可能性。
Onpattro用于治疗遗传性转甲状腺素蛋白淀粉样变性(hATTR)引起的周围多发性神经病。其作用机制是沉默hATTR mRNA,减少hTTR蛋白的产生,进而减少周围神经中的淀粉样沉积,达到治疗效果。临床给药途径为静脉输注,每3周给药一次。siRNA分子分子量约为14kD,具有大分子生物特性。
排泄途径主要通过尿液和胆汁。siRNA原型药物主要在给药后24小时内通过尿液排出体外,而大部分药物被肝脏迅速吸收。肝脏是药物消除的主要场所,其消除半衰期较长。药物相互作用的研究结果显示,已上市的siRNA药物对CYP酶和转运体的影响不大。
年7月14日, 美国生物制药公司圣诺制药(Sirnaomics)宣布,该公司候选药物STP705在用于预防瘢痕增生的2期临床试验中完成首位患者的剂量给药。STP705是一种siRNA(小干扰RNA)疗法,能够利用双靶向抑制特性和多肽纳米颗粒(PNP)增强的传递直接抑制TGF-β1和COX-2基因的表达。
目前,全球乙肝治疗缺乏有效治愈手段,腾盛博药的创新疗法——利用B细胞和T细胞免疫蛋白(BRII-179)以及siRNA疗法(BRII-835),旨在恢复人体对乙肝的免疫控制,可能为慢性乙肝患者带来治愈的希望。
1、操作流程如诗行般流畅:首先,输入Accession Number,锁定目标区域(ORF或UTR),确认你的研究对象是Mus musculus。接下来,是设计的黄金时刻,你将看到一个个候选siRNA跃然屏幕上,如5-CCCAGAGTTCTTTGCTCCGCTTATT-3,每一个序列都蕴含着可能性。
转染前1 h使用无血清培养基换液,避免转染试剂与血清中复合物形成沉淀,提升转染效率。若转染效率不佳,可提高细胞融合度至80~90%。 转染复合液制备使用前,轻轻摇匀Lipo试剂,取5 μL稀释至250 μL无血清培养液,室温静置5 min。
常规化学合成的siRNA,以21-23nt的双链形式提供,冻干形式的即用试剂可以稳定保存在-20℃至-80℃长达一年。使用时,需将siRNA粉末短暂离心,然后用DEPC-DW或无菌水溶解。推荐使用100pmole/μl浓度长期储存,超过2个月需置于-70°C以保持最佳效果,但需注意冻融次数不宜超过五次。
siRNA转染实验是一种利用RNA干扰技术特异性抑制基因表达的实验方法。以下是关于siRNA转染实验的详细解 实验原理: RNA干扰:通过胞质中的核酸内切酶Dicer将dsRNA裂解成由2125个核苷酸组成的siRNA。 siRNA与RISC结合:siRNA与体内蛋白结合形成RNA诱导的沉默复合物RISC。
转染时,将siRNA和转染试剂在室温下混合20分钟,然后均匀加入到细胞板中,培养48-72小时。检测转染效果通常在转染后48-72小时进行,可***用QPCR和WB等方法。QPCR推荐在24h到48h检测,应将引物设计在沉默位点两侧,以准确评估沉默效果。
LifeTechnologies公司有个非常实用的在线shRNA设计软件,操作非常方便,而且设计出来的shRNA不再需要到NCBI上Blast,直接可以用的。
输入RNA名字和序列(FASTA格式),点击Run ***ysis。网站根据评分高低排序设计的siRNA,去除评分低于90分的siRNA,选择排名靠前的siRNA进行设计。 invivogen设计网站(invivogen.com/sirnawiza...)输入RNA序列,点击search。网站不仅提供siRNA序列,还提供shRNA序列设计。
shRNA引物设计包括数据库介绍、输入基因ID、选择推荐的靶点序列、添加酶切位点和Loop环结构,以及设计shRNA片段。将Oligo片段正反向混合退火后,即可与载体连接,构建shRNA干扰载体。
shRNA设计原则围绕高效、特异性和安全性展开。首先,选择靶标时需综合考虑其特异性,避免非特异性干扰。推荐***用多个靶标以提高干扰效果。值得注意的是,shRNA序列中应避免连续四个以上的T,以防止成为RNA聚合酶III的终止信号。
以下是三种常用的siRNA在线设计网站: siDirect设计网站(sidirectrnai.jp/)输入NCBI序列号或序列信息(FASTA格式),点击design siRNA。网站将提供一系列siRNA设计,包括Tm值、脱靶效应等评估信息。
设计步骤: 利用在线工具:可以利用如sidirectrnai.jp/、rnaidesigner.thermofisher.com或invivogen.com/sirnawiza等在线工具进行设计。 输入CDS序列:以目标基因为例,找到其转录本,输入CDS序列进行设计。 Blast分析:设计完成后,通过Blast分析筛选特异性高的序列。
点击你要的序列号,会进入这个基因的基本信息,一直往下拉会看到mRNAandProtein(s),NM开头的序列号就是其CDNA的序列了。
设计时还需考虑序列特异性,建议设计多条siRNA以覆盖不同位置,确保高效沉默。siRNA设计网站如DSIR、siDirect和Thermofisher提供了便捷的在线设计工具。设计时需在NCBI查找基因编号和序列,注意选择各剪接体共享位置和区别于其他基因保守位置。
选择siRNA、shRNA或miRNA时,需考虑实验目的和细胞特性。siRNA适用于快速检测,shRNA适用于稳定沉默基因或植物研究,而miRNA适用于内源调控研究和跨物种研究。设计时需注意特异性、序列长度和热力学性质,以及结合在线工具进行辅助设计。
RNA干扰的类别包括siRNA、microRNA(miRNA)和shRNA。siRNA由dsRNA结合核酶复合物形成RNA诱导沉默复合物,通过碱基配对定位到同源mRNA上,切割mRNA。miRNA由内源性发夹结构转录产物衍生而来,靶向干扰成熟miRNA。shRNA是设计为能够形成发夹结构的非编码小RNA分子,通过RNA干扰来抑制基因表达。
1、综上所述,在特殊质粒背景下设计PROK1 shRNA时,所使用的BsaI酶切位点能够实现与双酶切相似的效果。因此,在设计过程中,应充分考虑质粒特异性酶切位点的限制,并灵活运用酶切特点来调整序列设计,以确保shRNA序列与所使用的质粒兼容。在特殊情况下,BsaI单酶切能够为设计提供额外的灵活性,使实验者能够在不影响shRNA功能的前提下,克服酶切位点的限制。
2、设计shRNA时,碰到的特殊案例与BsaI内切酶相关,引发了一番思考。原本以为是单酶切,但查阅文献后得知,BsaI单酶切实际上能起到双酶切的效果,这令人惊讶。
3、RNA干扰(RNA interfering, RNAi)利用AAV病毒载体表达shRNA进行基因沉默,具有高度序列专一性,能特异性抑制基因表达,用于功能基因组学研究、基因功能研究、信号通路研究、构建疾病模型和基因治疗。shRNA载体设计包括干扰序列设计、载体构建、筛选检测、rAAV包装与纯化、滴度检测等步骤。
4、对于miR30-shRNA干扰载体,设计要点在于引导序列需与靶DNA完美互补,并模仿人类miRNA30的结构。为避免非特异性结合,应确保有义链的第一个碱基与靶序列的5’端第一个碱基的互补性。例如,若靶序列的5’端第一个碱基为A,则引导序列的第一个碱基应为C;若为G,则应为T。
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